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５．フリーズレプリカ法

（１）フリーズレプリカ法（凍結割断レプリカ法）

　Steere RL（1953）らは凍結固定を利用し、凍結切片とは異なり、かつ簡便な方法（当時、凍結切片は熟練を要する方法であった）で新鮮状態の構造を電子顕微鏡で観察しようと試みた。これがフリーズレプリカ法の始まりである。しかし、実際の手技はかなり難しい上に、グルタールアルデヒドによる前固定を余儀なくされていた。急速凍結法が発展する最近まで無化学固定の標本観察は出来なかったが、凍結割断により従来の切片法では得られなかった膜内の三次元構造が明らかになり、細胞生物学の分野にブレークスルーをもたらした。その後、氷晶防止剤を使用しない急速凍結標本では細胞質水分（氷）の昇華（エッチング）が容易であるため、細胞骨格の三次元構造解析にも威力を発揮した。ここではこのようなユニークな電顕観察法であるフリーズレプリカ法についてその方法と特徴について解説する。この方法は厳密にはフリーズフラクチャーとフリーズエッチングの二つの方法に分けられる。前者は真空中で凍結試料を割断後直ちに白金を蒸着し、レプリカを作製する。後者は氷晶防止剤（グリセロール）を用いない急速凍結標本に有効で、割断後温度を-90℃ぐらいまで上昇させ、割断面から氷の昇華を促した後、蒸着してレプリカとする。すなわち、エッチングとは割断面を僅かに真空凍結乾燥させることである。前述のようにフリーズフラクチャーでは膜内の分子構築（P面とE面）とりわけ膜蛋白質の膜内での分布を明らかにできる。フリーズエッチングでは形態情報はさらに多く、膜内構造に加え氷の昇華により露出した細胞膜の表面（PS面、ES面）や細胞内外のマトリックス構造、細胞骨格を観察できる。　ところで、膜の割断面などの呼称は組織学の教科書にも載っているが、専門外の方のために改めてここで紹介する。生体膜が凍結割断されるとき脂質二重膜の疎水性面に沿って割れるときがあり、このとき細胞質側の半葉を外側から見た面をP面と呼び、これとは逆に細胞外に接した半葉を細胞質側から見た面をE面と呼ぶ。またフリーズエッチングではこれらとともに細胞質に接した膜の表面と細胞の外に接した膜の表面（真の表面）が露出されるが、それらをそれぞれPS面、ES面と呼ぶ取り決めとなっている（図1）。　ここでは急速凍結標本のフリーズレプリカ法を中心に話を進めるが、これらの方法は化学固定標本にももちろん適用できる。この場合、グルタールアルデヒドで前固定後30〜40%グリセロール（氷晶防止剤）で処理し、緩慢な凍結においても氷晶形成が起きないようにする。しかし、グリセロールは高真空中でもほとんど昇華しないので、きれいなエッチング像は得られない。はじめに化学固定標本を用いた一般的なフリーズフラクチャー法について説明する。

	図1　膜構造と膜面の名称を示す図
	(注）膜の細胞質側の表面をPS面、外側（真の）表面をES面。膜が疎水性面に沿って割断されたとき、その細胞質側半葉を外側から見た面をP面、また外側半葉を内側から見た面をE面と呼ぶことになっている。

フリーズフラクチャー（レプリカ）法の実際

必要な物：フリーズレプリカ作製装置（BAL-TEC社製フリーズレプリカ作製装置BAF 060、日立FR7000など）前固定液、グリセロール、液体窒素

実際の手順

1. 新鮮な組織を前固定液（2%グルタールアルデヒド、2%パラホルムアルデヒド混合固定液）で2時間固定する。
   
2. 固定後緩衝液で5分ずつ2回洗浄し、その後40%グリセロールに2時間〜overnight浸漬する（通常の液体窒素のみで凍結するときはこの濃度が必要であるが、液体窒素で冷却した液体プロパン、液体エタンまたは一度ロータリーポンプで引いて固化した後の液体窒素スラッシュを使用する場合は30%の濃度でも無氷晶凍結ができる）。
   
3. 組織標本をフリーズレプリカ作製装置の試料台の大きさに合わせて細切し、試料台にのせる。普通1 mm〜2 mm角ぐらいである。
   
4. 試料台ごと試料を冷媒（液体窒素または液体プロパン、液体エタン）に浸漬し凍結する。
   
5. フリーズレプリカ作製装置は2時間以上前から作動させ、あらかじめ十分な真空度（10^-7 mmHg）と低温(-110℃)にしておく。マニュアルに従い、凍結試料を手早く装置内の所定の位置にセットし，再排気する。
   
6. 試料を割断後、その割断面に白金とカーボンを蒸着する。白金は40度の角度から2 nm程の厚さ、またカーボンは90度の角度から10 nm程度の厚さ蒸着するのが普通である。試料を回転させながら蒸着するrotary shadowingという方法もある。この場合白金の蒸着角度は少し低角で25度にする。
   
7. 蒸着後試料を大気中に取り出し、室温まで暖め、キッチンハイターやブリーチなどの次亜塩素酸主剤の漂白剤で試料組織を溶かし、蒸着膜（レプリカ）を遊離させる。これがレプリカ法と言われる所以である。
   
8. 組織が溶け液面に浮いているレプリカはさらに2回蒸留水で洗浄してからメッシュ（グリッド）にとり透過型電顕で観察する。この時の洗浄は図2のように蒸留水を満たしたペトリディッシュに白金ループや薬品に強いモリブデンメッシュを用いてレプリカを壊さないように丁寧に蒸留水液面に慎重に移す。実は次亜塩素酸主剤の漂白剤から純水に移すと表面張力の違いからレプリカが分断されることが多い。そこで、我々はコダック社のフォトフローを純水にごく微量混ぜておくことで、レプリカの破損を防いでいる。フォトフローを入れるのと入れないのでは破損具合がかなり違うので是非試されたい。ごく微量というのは白金線をフォトフローに突っ込み、引き上げたとき白金線の周り付着するほどの量で、肉眼ではほとんど見えない量である。
   
   

   	図2　レプリカの洗浄法を示す図
   	(注）溶液から溶液（蒸留水）へとレプリカを移動させ洗浄する。レプリカの移動には白金ループを使用するのが一般的であるが筆者は耐薬品性に強いモリブデンメッシュを使用している。図のようにメッシュの端をおり、そこをピンセットでつかみ溶液と共にレプリカをすくい、移動させる。

9. 洗浄後のレプリカは膜張りメッシュ上に移し、乾燥する。これが以外と熟練を要する。慣れないうちはメッシュを親水化しておくと良い。レプリカの一端を膜張りメッシュの上部に付着させ、引くようにしてすくい上げる。（図3）

	図3　洗浄後のレプリカをメッシュ上に載せる方法を示す図
	(注）フォルムバール支持膜を張ったメッシュを用いる。メッシュの2/3を水につけ60度ぐらいの角度を付けたままレプリカに近づけ、レプリカの端をメッシュ上部に接触させ、角度を変えずに引き上げるとレプリカは自然とメッシュ上に載るはずである。

　

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